1、1M Tris-HCl (pH7.4,7.6,8.0) □组份浓度 1 M Tris-HCl □配制量 1L □配置方法 1. 称量121.1gTris置于1L烧杯中。 2、1.5 M Tris-HCl (pH8.8) □组份浓度 1.5 M Tris-HCl □配制量 1L □配置方法 1.称取181.7gTris置于1L烧杯中。 3、10×TE Buffer (pH 7.4,7.6,8.0) □组份浓度 100 mM Tris-HCl,10 mM EDTA □配制量 1L □配置方法 1. 量取下列溶液,置于1L烧杯中。 4、3 M 醋酸钠 (pH5.2) □组份浓度 3 M 醋酸钠 □配制量 100mL □配置方法 1. 称取40.8gNaOAc•3H2O置于100~200mL烧杯中,加入约40mL的去离子水搅拌溶解。 5、PBS Buffer □组份浓度 137 mM NaCl,2.7mM KCl,10 mM Na2HPO4,2 mM KH2PO4 □配制量 1L □配置方法 1. 称量下列试剂,置于1L烧杯中。 6、10 M醋酸铵 □组份浓度 10 M醋酸铵 □配制量 100mL □配置方法 1. 称量77.1g醋酸铵置于100~200 mL烧杯中,加入约30 mL的去离子水搅拌溶解。 7、Tris- HCl平衡苯酚 □配置方法 1. 使用原料:大多数市售液化苯酚是清亮无色的,无需重蒸馏便可用于分子生物学实验。但有些液化苯酚呈粉红色或黄色,应避免使用。同时也应避免使用结晶苯酚,结晶苯酚必须在160℃对其进行重蒸馏除去诸如醌等氧化产物,这些氧化产物可引起磷酸二酯键的断裂或导致RNA和DNA的交联等。因此,苯酚的质量对DNA、RNA的提取极为重要,我们推荐使用高质量的苯酚进行分子生物学实验。 2. 操作注意:苯酚腐蚀性极强,并可引起严重灼伤,操作时应戴手套及防护镜等。所有操作均应在通风橱中进行,与苯酚接触过的皮肤部位应用大量水清洗,并用肥皂和水洗涤,忌用乙醇。 3. 苯酚平衡:因为在酸性pH条件下DNA分配于有机相,因此使用苯酚前必须对苯酚进行平衡使其pH值达到7.8以上,苯酚平衡操作方法如下: |
13、20%(W/V)Glucose □组份浓度 20%(W/V)Glucose □配制量 100mL □配置方法 1. 称取20g Glucose置于100~200mL烧杯中,加入约80mL的去离子水后,搅拌溶解。 14、Solution I (质粒提取用) □组份浓度 25 mM Tris-HCl(pH8.0),10mM EDTA,50mM Glucose □配制量 1L □配置方法 1. 量取下列溶液,置于1L烧杯中。 15、Solution II (质粒提取用) □组份浓度 250mM NaOH,1%(W/V)SDS □配制量 500mL □配置方法 1. 量取下列溶液置于500mL烧杯中。 16、Solution III (质粒提取用) □组份浓度 3M KOAc,5M CH3COOH □配制量 500mL □配置方法 1. 量取下列溶液置于500mL烧杯中。 17、0.5M EDTA (pH8.0) □组份浓度 0.5 M EDTA □配制量 1L □配置方法 1. 称取186.1g Na2EDTA•2H2O,置于1L烧杯中。 18、1 M DTT □组份浓度 1 M DTT □配制量 20mL □配置方法 1. 称取3.09g DTT,加入到50mL塑料离心管内。 19、10mM ATP □组份浓度 10mM ATP □配制量 20mL □配置方法 1. 称取121mg Na2ATP•3H2O,加入到50mL塑料离心管内。 |
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