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标签: 免疫细胞化学 常用试剂 介绍

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二、缓冲液

免疫细胞化学中应用的缓冲液种类较多,即使是同种缓冲液,其浓度、pH、离子强度等也常不同。在此介绍几种最常用缓冲液的配制。

1、0.2mol/L pH7.4磷酸盐缓冲液(Phosphate Buffer,PB)

试剂: NaH2PO4·2H2O、Na2HPO4·12H2O。

配制方法:配制时,常先配制0.2mol/L的NaH2PO4和0.2mol/L的Na2HPO4,两者按一定比例混合即成0.2mol/L的磷酸盐缓冲液(PB),根据需要可配制不同浓度的PB和PBS。

(1)0.2mol/L的NaH2PO4;称取NaH2PO4·2H2O 31.2 g 或NaH2PO4·H2O 27.6g加重蒸水至1000ml溶解。

(2)0.2mol/L的Na2HPO4:称取Na2HPO4·12H2O 71.632g(或Na2HPO4·7H2O 53.6g或Na2HPO4·2H2O 35.6g)加重蒸水至1000ml溶解。

(3)0.2mol/L pH7.4的PB的配制:取19ml 0.2mol/L的NaH2PO4和81ml 0.2mol/L的Na2HPO4·12H2O,充分混合即为0.2mol/L的PB(pH约为7.4~7.5)。若pH偏高或偏低,可通过改变二者的比例来加以调整,室温保存即可。

2、0.01mol/L磷酸盐缓冲生理盐水(Phosphate Buffered Saline, PBS)

试剂:0.2 mol/L PB       50ml

     NaCl        8.5~9g(约0.15mol/L)

     重蒸水       至1000ml

配制方法:称取NaCl8.5~9g及0.2mol/L的PB50ml,加入1000ml的容量瓶中,最后加重蒸水至1000ml,充分摇匀即可。若拟配制0.02mol/L的PBS,则PB量加倍即可,依此类推。

PB和PBS是免疫细胞化学实验中最为常用的缓冲液,0.01mol/L的PBS主要用于漂洗组织标本、稀释血清等,其pH应在7.25~7.35之间,否则需要调整。0.1mol/L的PB常用于配制固定液、蔗糖等。一般情况下,0.2mol/L PB的pH值稍高些,稀释成0.01mol/L的PBS时,常可达到要求的pH值,若需调整pH,通常也是调PB的pH。

3、Karasson–Schwlt's磷酸盐缓冲液

试剂:  NaH2PO4·H2O            3.31g

       Na2HPO4·7H2O           33.77g

       重蒸水        至1000ml

配制方法:同前。该缓冲液主要用于配制Zamboni's固定液。

4、0.5mol/L pH7.6的Tris- HCl缓冲液。

试剂:Tris(三羟甲基氨基甲烷)  60.57g

     1 N HCl         约420ml

     重蒸水          至1000ml

配制方法:先以少量重蒸水(300~500ml)溶解Tris,加入HCl后,用1N的HCl或1N的NaOH将pH调至7.6,最后加重蒸水至1000ml。此液为储备液,于4℃冰箱中保存。免疫细胞化学中常用的Tris-HCl缓冲液浓度为0.05mol/L,用时取储备液稀释10倍即可。

该液主要用于配制Tris缓冲生理盐水(TBS)、DAB显色液。

5、Tris缓冲生理盐水(Tris Buffered Saline,TBS)

试剂:0.5mol/L Tris-HCl缓冲液   100ml

     NaCl           3.5~9g(0.15mol/L)

    重蒸水           至1000ml

配制:先以重蒸水少许溶解NaCl,再加Tris-HCl缓冲液,最后加重蒸水至1000ml,充分摇匀使Tris终浓度为0.05mol/L。

TBS主要用于漂洗标本,常用于免疫酶技术中。

6、Tris-TBS(TBS)

试剂:Triton X-100                10ml(1%)或3ml(0.3%)

     0.5mol/L Tris缓冲液(pH7.6)  1000ml(50ml)或(0.2mol/L的PB)

      NaCl             8.5~9g

      重蒸水            至1000ml

配制方法:先以重蒸水少许溶解NaCl后,加入Triton X-100及Tris缓冲液或(PB),最后加重蒸水至1000ml,充分摇匀。

该液常用浓度为1%及0.3%,前者主要用于漂洗标本,后者主要用于稀释血清。

7、0.1mol/L(pH7.4)二甲胂酸缓冲液

试剂:0.2mol/L二甲胂酸钠      500ml

      0.1N HCl           28ml

     蒸馏水            至1000ml

配制方法:先称取二甲胂酸钠(MW:214)42.8g,加蒸馏水至1000ml,使0.2mol/L的二甲胂酸钠溶液;再取HCl1.7ml加蒸馏水至1000ml,配成0.1N,最后取0.2mol/L二甲胂酸钠溶液500ml及0.1N HCl28ml混合,加蒸馏水至1000ml,即为0.1mol/L的二甲胂酸钠缓冲液。

三、显色液

免疫细胞化学中,由于抗原-抗体反应所形成的复合物本身无色,无法直接观察,因而需借助于某些化学基团的呈色作用,使其得以显示,以利于在显微镜下观察。常用的显色液有:

1、DAB(Diaminobenzidine)显色液

DAB即3,3-二氨基苯联胺

试剂:DAB(常用四盐酸盐)     50 mg

     0.05mol/L TB       100 ml

      30% H2O2       30~40 μl

配制方法:先以少量0.05mol/L(pH7.6)的TB溶解DAB,然后加入余量TB,充分摇匀,使DAB终浓度为0.05%,过滤后显色前加入30%的H2O 230~40μl,使其终浓度为0.01%。

DAB显色液主要用于免疫过氧化物酶法(如酶标法、PAP法等),其终产物可直接在光镜下观察,也可经OsO4处理后,增加反应产物的电子密度,用于电镜观察。但有几点需注意:DAB溶解要完全,否则未溶解的颗粒沉积于标本上影响观察;DAB浓度不易过高,否则显色液呈棕色,增加背景染色,另外DAB有致癌作用,故操作时应戴手套,尽量避免与皮肤接触,用后及时彻底冲洗,接触DAB的实验用品最好经洗液浸泡24 h后使用。

2、4-氯-1-萘酚(4-Cl-1-Naphthol)显色液

配方1:4-Cl-1-萘酚           100 mg

       纯乙醇            10 ml

      0.05 mol/L TB(pH7.6)     190 ml

      30% H2O2          10 μl (0.003%)

配制方法:先将4-Cl-1-萘酚溶解于乙醇中,然后加入TB19ml,用前加入30%H2O2使其终浓度为0.005%,切片显色时间通常为5~20min。

配方2:4-Cl-1-萘酚、N-二甲基甲酰胺(DMF)、0.05mol/L TB(pH7.6)、30% H2O2

配制方法:先将4-Cl-1-萘酚加入DMF中,加热溶解使呈乳白色,再加入TB,乳白色变为絮状,在7.5℃加热5min后加入H2O2,搅动使絮状消失,趁热过滤,当降至略低于50 ℃时才放入组织标本(注意:温度过高易损伤标本,过低则易重新出现沉淀)。显色时间通常为5min左右。

4-Cl-1-萘酚的终产物显示蓝色。多数认为最好去除白色沉淀(如上述),但Larsson等认为,白色沉淀可作为背景,使阳性部位更易观察。由于酒精可溶解4-Cl-1-萘酚显色的组织标本,勿用酒精脱水。

3、3-氨基-9-乙基卡唑(3-amino-9-ethylcarbozole,AEC)显色液

试剂:AEC                       20 mg

     二甲基甲酰胺(DMF)      2.5 ml

     0.05 mol/L醋酸缓冲液(pH5.5)   50 ml

     30%H2O            25 ml

配制方法:先将AEC溶于DMF中,再加入醋酸缓冲液充分混匀。临显色前,加入30%H2O2。切片显色时间为5~20min。

该显色液作用后,阳性部分呈深红色,加以苏木精或亮绿等作为背景染色,则效果更佳。由于终产物溶于酒精和水,故需用甘油封固。

4、TMB显色液

试剂:TMB、HCl、亚硝基铁氰化钾、无水酒精。

配制方法:

(1)醋酸盐缓冲液:取1.0mol/L的HCl 190ml加入1.0mol/L的醋酸钠400ml中混合,再加蒸馏水稀释至1000ml,用醋酸或NaOH将pH调至3.3。

(2)A液:取上述缓冲液5ml,溶解100mg亚硝基铁氰化钾,加蒸馏水92.5ml混合。

(3)B液:称取5mg TMB加入2.5ml无水酒精中,可加热至37℃~40℃直到TMB完全溶解。

(4)孵育液:放入标本前数秒,取2.5ml B液及97.5 ml A溶于试管中充分混合。(液体在20min内应保持清亮的黄绿色,否则可能已有污染)。酶反应时,加入终浓度为0.005%的H2O2

(5)主要显色步骤:组织标本在蒸馏水(或PBS)中漂洗数次(每次约10~15min)后放入未加H2O2的孵育液中作用20min(19℃~30℃),然后向孵育液中放入H2O2(每100ml孵育液中加0.3%的H2O21.0~5.0ml)继续孵育液20min左右(19℃~23℃),捞出标本漂洗数次(共30min左右)。在0~4℃条件下可在漂洗液放置4 h、直至贴片、脱水,封片。也可在贴片前在1%的中性红中负染2~3min,也可在1%派诺宁(pH3.3~3.5)中负染5 min后贴片、脱水、封片。

TMB即四甲基联苯胺(Tetrabenzidine)是一种脂溶性较强的基团,因此容易进入细胞与细胞器中的HRP反应,且由于这种高度的脂溶性,使其易形成多聚体,在HRP活性部位产生粗大的、深兰色沉淀物,这使得TMB成为组化实验中的一种很好的发色团。同时反应产物的沉淀,使得HRP的活性部位更加暴露,利于酶氧化反应进行。TMB的反应产物为深蓝色,利于光镜观察,且反应产物越聚越大,常超出单个细胞器的范围(而DAB则被限制在其内),故TMB反应的检测阈较低。由于上述优点,目前TMB常用于光镜及超微结构水平的HRP及HRP-WGA神经投射的研究。需要注意的是:TMB显色液中的A液和B液应在2 h内新鲜配制。另外,TMB是一种较强的皮肤刺激剂,并有致癌的潜在可能,故使用时应带手套及在通风条件下操作。

5、NBT显色液

试剂:A液  5%NBT:称取0.5g NBT溶于10ml 70%的DMF(二甲基甲胺)内,充分混合,常存于4℃,也可装成小份,-20℃保存,用前复温; B液  5% BCIP:称取BCIp 0.5g溶于10 ml 100%的DMF内,混匀。4℃或分装存于-20℃,用前恢复至室温。

显色液:取A液40μl,加入到盛有10ml的0.1mol/l Tris-HCl(pH9.5,0.1mol/L NaCl、5mmol/L MgCl2)管内,充分混匀;再加入B液40 μl,轻轻混合即可。最好用前新鲜配制。

NBT即四唑氮蓝(Nitro-Blue-Tetrazolium),MW=818,为深蓝色无定形微溶物质。BCIP即5-溴-4-氯-3-吲哚-磷酸盐(5-bromo-4-chloro-3-indolyl-phosphate)。当二者存在时,在碱性磷酸酶(Alkaline phosphatase,AP)作用下,NBT被还原形成显微镜下可见的蓝色或紫色沉淀。

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