采血方法的选择，决定于实验的目的所需血量以及动物种类。

凡用血量较少的检验如红、白细胞计数、血红蛋白的测定，血液涂片以及酶活性微量分析法等，可刺破组织取毛细血管的血。当需血量较多时可作静脉采血。静脉采血时，若需反复多次，应自远离心脏端开始，以免发生栓塞而影响整条静脉。例如，研究毒物对肺功能的影响、血液酸碱平衡、水盐代谢紊乱，需要比较动、动脉血氧分压、二氧化碳分压和血液pH值以及K⁺、Na⁺、CI^-离子浓度，必须采取动脉血液。

一、采血时要注意

⑴采血场所有充足的光线；室温夏季最好保持在25～28℃，冬季，15～20℃为宜；
　　⑵采血用具有采用部位一般需要进行消毒；
　　⑶采血用的注射器和试管必须保持清洁干燥；
　　⑷若需抗凝全血，在注射器或试管内需预先加入抗凝剂.

二、取血量与取血部位的关系

1．取少量血

ａ．尾静脉 大鼠、小鼠
　　ｂ．耳静脉 兔、狗、猫、猪、山羊、绵羊
　　ｃ．眼底静脉丛 兔、大鼠、小鼠
　　ｄ．舌下静脉 兔
　　ｅ．腹壁静脉 青蛙、蟾蜍
　　ｆ．冠、脚蹼皮下静脉 鸡、鸭、鹅

2．取中量血

ａ．后肢外侧皮下小隐静脉 狗、猴、猫
　　ｂ．前肢内侧皮下头静脉 狗、猴、猫
　　ｃ．耳中央动脉 兔
　　ｄ．颈静脉 狗、猫、兔
　　ｅ．心脏 豚鼠、大鼠、小鼠
　　ｆ．断头 大鼠、小鼠
　　ｇ．翼下静脉 鸡、鸭、鸽、鹅
　　ｈ．颈动脉 鸡、鸭、鸽、鹅

3．取大量血

ａ．股动脉、颈动脉 狗、猴、猫、兔
　　ｂ．心脏 狗、猴、猫、兔
　　ｃ．颈静脉 马、牛、山羊、绵羊
　　ｄ．摘眼球 大鼠、小鼠

三、采血动物品种的最大安全采血量（ml）和最小致死采血量（ml）

四、主要的采血方法

1.割（剪）尾采血

当所需血量很少时采用本法。固定动物并露出鼠尾。将尾部毛剪去后消毒，然后浸在45℃左右的温水中数分钟，使尾部血管充盈。再将尾擦干，用锐器（(刀或剪刀）割去尾尖0.3～0.5cm，让血液自由滴入盛器或用血红蛋白吸管吸取，采血结束，伤口消毒并压迫止血。也可在尾部作一横切口，割破尾动脉或静脉，收集血液的方法同上。每鼠一般可采血10余次以上。小鼠每次可取血0.1ml，大鼠0.3～0.5ml。

2.鼠尾刺血法

大鼠用血量不多时（仅做白细胞计数或血红蛋白检查），可采用本法。先将鼠尾用温水擦拭，再用酒精消毒和擦拭，使鼠尾充血。用7号或8号注射针头，刺入鼠尾静脉，拔出针头时即有血滴出，一次可采集10～50mm³。如果长期反复取血，应先靠近鼠尾末端穿刺，以后再逐渐向近心端穿刺。

3.眼眶静脉丛采血

采血者的左手拇食两指从背部较紧地握住小鼠或大鼠的颈部（大鼠采血需带上纱手套），应防止动物窒息。当取血时左手拇指及食指轻轻压迫动物的颈部两侧，使眶后静脉丛充血。右手持续接7号针头的1ml注射器或长颈（3～4cm）硬质玻璃滴管（毛细管内径0.5～1.0mm），使采血器与鼠面成45℃的夹角，由眼内角刺入，针头斜面先向眼球，刺入后再转180度使斜面对着眼眶后界。刺入浓度，小鼠约2～3mm，大鼠约4～5mm。当感到有阻力时即停止推进，同时，将针退出约0.1～0.5mm，边退边抽。若穿刺适当血液能自然流入毛细管中，当得到所需的血量后，即除去加于颈部的压力，同时，将采血器拔出，以防止术后穿刺孔出血。 若技术熟练，用本法短期内可重复采血均无多大困难。左右两眼轮换更好。体重20～25g的小鼠每次可采血0.2～0.3ml；体重200～300g大鼠每次可采血0.5～1.0ml，可适用于某些生物化学项目的检验。

4.断头取血

采血者的左手拇指和食指以背部较紧地握住大（小）鼠的颈部皮肤，并作动物头朝下倾的姿势。右手用剪刀猛剪鼠颈，约1/2～4/5的颈部前剪断，让血自由滴入盛器。小鼠可采用约0.8～1.2ml；大鼠约5～10ml。

5.心脏采血

鼠类的心脏较小，且心率较快，心脏采血比较困难，故少用。活体采血方法与豚鼠相同。若做开胸一次死亡采血，先将动物作深麻醉，打开胸腔，暴露心脏，用针头刺入右心室，吸取血液。小鼠约0.5～0.6ml；大鼠约0.8～1.2ml。

6.颈动静脉采血

先将动物仰位固定，切开颈部皮肤，分离皮下结缔组织，使颈静脉充分暴露，可用注射器吸出血液。在气管两侧分离出颈动脉，离心端结扎，向心端剪口将血滴入试管内。

7.腹主动脉采血

最好先将动物麻醉，仰卧固定在手术架上，从腹正中线皮肤切开腹腔，使腹主动脉清楚暴露。用注射器吸出血液，防止溶血。或用无齿镊子剥离结缔组织，夹住动脉近心端，用尖头手术剪刀，剪断动脉，使血液喷入盛器。

8.股动（静）脉采血

先由助手握住动物，采血者左手拉直动物下肢，使静脉充盈。或者以搏动为指标，右手用注射器刺入血管。体重15～20g小鼠采血约0.2～0.8ml，大鼠约0.4～0.6ml。