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动物实验基本技术之十一“手术操作”

标签: 实验动物 基本技术 手术操作

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 一、实验常用手术器械

 机能实验常对动物进行手术,因此识别和正确使用各种手术器械,既关系到操作能力的培养和实验的成败,也为今后完成动物外科打下基础。现将常用的手术器械种类及使用简述如下:

(一)剪刀

1、手术剪(组织剪) 有直、弯两型,又分圆头和尖头两种。手术剪用于剪肌膜、浅筋膜、神经和血管等软组织;也可用于剪手术线。

2、眼科剪  多用于剪较小范围内的神经和血管等软组织。禁止剪线、毛发及坚韧的结构。

 3、粗剪刀(普通剪刀)  可用于剪皮肤,蛙类骨骼与肢体等较坚韧的结构,或在实验中作杂用。

(二)手术刀

生理学实验用于切开皮肤、骨膜和器官等。使用时,可根据操作的要求,选用适当的执刀手法。

(三)止血钳

 止血钳分直钳与弯钳及大、中、小号规格,又分有齿和无齿两类。有齿的用于夹持皮肤,无齿的除用于止血外,也用于分离皮下组织、肌肉和腹膜等。

正确的执钳姿式是:以一手的拇指和无名指分别插套在止血钳的两个握环内,中指紧靠在无名指前的环柄上,食指贴压在止血钳关节的开合处作依托,以便准确地改变和控制止血钳尖端的用力方向、角度、力量和稳定性。

(四)手术镊

手术镊有圆头与尖头、有齿与无齿、大与小多种规格。有齿镊用于夹持皮肤、韧带等坚韧的的组织。无齿镊用于夹持较脆弱的组织,如血管、神经、粘膜等。另有一种较小的眼科镊,用于夹持细微结构的软组织。正确的执镊姿式如:

(五)持针器

 持针器用于夹持缝合针的近尾端1/3处。

(六)咬骨剪与咬骨钳

咬骨剪与咬骨钳用于打开颅腔、骨髓腔和暴露脊髓时咬剪骨质,以及开胸时修剪肋骨的断端。

(七)颅骨钻

 颅骨钻用于开颅时钻孔。

(八)其它

1、刺蛙针  用于破坏蛙的脑和脊髓。

2、玻璃分针  用于分离神经,血管和肌肉等。

3、锌铜弓(叉)  用于对蛙类的神经和肌肉标本施加刺激,以检查其兴奋性。

 4、蛙心夹  使用时,以其尖端在蛙心舒张期夹住心尖处,其尾端环孔借手术线连接于张力换能器或描记杠杆上,用于描记蛙心的舒缩活动。

5、蛙板  用于固定蛙类,以便解剖操作。中央有2cm孔的小蛙板,用于蛙类的微循环观察。

6、厚玻璃板  在剥去皮肤后的蛙类神经和肌肉标本制作时使用。

附注:

1、蛙类手术器械:粗剪刀、组织剪、眼科剪、组织镊、眼科镊、刺蛙针、锌铜弓、蛙心夹、蛙板各一,玻璃分针2支,图钉4枚,丝线1卷。

2、哺乳类动物手术器械:手术刀、粗剪刀、组织剪、组织镊、眼科镊、眼科剪各一,直止血钳、弯止血钳、蚊氏止血钳各二,气管插管,玻璃分针,缚绳,丝线。

二、实验基本操作技术

(一)插管术

1、气管插管术

在急性实验中为了保持呼吸通畅常需做气管插管术。其方法是在喉部下1cm处,沿颈前部正中线作一适当长度的皮肤切口(兔4cm左右即可,狗可以稍长些)。用止血钳将颈前正中的肌肉分向两侧,暴露出气管;再分离气管周围的结缔组织,使气管游离出来,在气管下方穿一根粗棉线。于甲状软骨下1~3cm处横切气管软骨环,再用剪刀沿正中线向头端剪开气管约1cm长,使气管切口呈倒“T”形。然后迅速、轻巧地将气管插管向肺方向插入气管内,用事先穿好的粗棉线,在切口下方将插管与气管结扎,同时将线固定于插管交叉处,以防止插管滑出。

插管后,如动物突然出现呼吸急促,常提示气道内有血液或血块堵塞,应迅速拔出插管,去除堵塞物重插。实验中应始终保持气管插管与气管走向平行。

2、动脉插管术

生理学实验常进行的是颈总动脉插管,具体步骤是:

①按神经和血管分离术的方法游离出颈总动脉。

②血管下放置二根丝线,一根在血管远心端结扎,一根置于动脉夹与结扎点之间备用。

③用动脉夹在血管近心端(结扎点下方2cm处)夹闭血管。

④眼科剪在近结扎点稍下方剪一斜形切口,约剪开管径的一半。

⑤将充满抗凝剂(肝素生理盐水混合液)的动脉插管(动脉套管或塑料导管)插入动脉,用备用丝线结扎固定。

⑥检查动脉插管与检压装置(水银检压计或压力换能器)是否密闭无漏液后,放开动脉夹,血液进入插管,即可进行实验。

3、输尿管插管术

输尿管插管是引流尿液的方法之一,其操作步骤是:

①动物常规麻醉、固定、气管插管。

②下腹部剪毛,耻骨联合上缘正中线切开皮肤4cm,沿腹白线剪开腹壁,暴露膀胱。

③用手轻轻将膀胱拉出腹腔,反转膀胱暴露膀胱三角,于膀胱三角辨别输尿管(注意与输精管、输卵管区别,前者直后者弯曲),用玻璃分针将输尿管周围组织分离干净,分离输尿管约2cm。

④于输尿管下方穿二根丝线,将近膀胱端的输尿管用一丝线结扎,另一丝线备用。

⑤一手小指挑起输尿管,眼科剪于结扎线处剪切输尿管一斜形切口;将充满生理盐水的细塑料管向肾脏方向插入输尿管内,用备用丝线结扎固定。

⑥调整、固定插管,使其与输尿管保持同一走向,防止插管尖端翘起成夹角,影响尿液的流出。

4、破坏蛙类脑与脊髓的方法   用蛙类进行生理实验,应首先破坏其脑和脊髓,其操作步骤是:

①左手握住动物,食指将头部前端压住。

②用刺蛙针沿正中缝从前向后滑动至落空感,刺蛙针处见一凹陷,此为枕骨大孔。

③然后将刺蛙针垂直刺入枕骨大孔内,针尖斜向前伸入颅腔左右搅动,捣毁脑组织。

④再将刺蛙针退回枕骨大孔处(不要退出孔外),针尖转向后方插入脊锥管上下搅动,捣毁脊髓。当二后肢突然僵直,随即松软。

5、神经和血管分离术

生理学实验常进行的是颈部神经和血管的分离,分离步骤是:

①按气管插管术切开颈前部皮肤和分离皮下组织、肌肉。

②颈总动脉、迷走神经、交感神经及减压神经位于气管外侧的动脉鞘内,一手拇指和食指捏住切口皮肤,将动脉鞘组织顶起,辨别清各组织后, 一手持玻璃分针沿神经、血管的走向分离动脉鞘膜。

③打开动脉鞘后,捏持皮肤的手不放松保持各组织的自然位置,以先分离细小后粗大组织的顺序,依次分离出各组织(其长度约2cm),每分离出一条组织便在其下方穿一根生理盐水湿润的彩色丝线,以便识别和实验操作。神经和血管都是比较娇嫩、易受损伤的组织。

因此,在分离过程中要耐心、仔细、动作轻柔,切不可用手术刀、剪刀或带齿的镊子进行剥离,也不能用止血钳或镊子夹持,以免损伤其结构和机能。

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