gdgznf2008:大家看看我的293细胞状态怎样? 适合转染吗? 下一张 下一张 下一张 下一张 生命经纬网友pmy5155714认为: 不太好至少你的细胞长的太不均匀了 而且有的细胞已经老化消化的问题 生命经纬网友gdgznf2008认为: 我的细胞是师兄冻存的,也不知多少代了,我用的是0.025的胰酶+EDTA消化的,而且尽量吹打均匀,可接种后仍然长的不均匀,呈片状生长。我试的转染了,效率不高,还能不能用来转染做表达啊? 望各位指点 生命经纬网友coffee1170330: 你怎么评价转染效率的那?效率大概多少? 生命经纬网友gdgznf2008: 我是通过大致估计细胞数来计算的,即荧光显微镜下细胞数与总的细胞数之比计算的,转染率约10%,质粒是去内毒素提的,浓度约1.0μg/μl,转染试剂是lipofectmin2000,想再试一次,细胞是师兄留下的,也不知几代了,想看看是不是细胞的原因。 生命经纬网友happycowcow认为: 首先你一定要明确代数,这一点很重要。转染的时候用低代的293细胞转染效率高。如果转染效率低,首先你就应该考虑293的代数太高了。我用腺病毒转低代的293细胞(第40代左右),转染效率几乎100%,用质粒转染293细胞的时候,转染效率至少20%。 另外,293细胞挺好养的,它贴壁很不牢,消化的时候我都是用自己配的大约0.125%的胰酶,不加EDTA,有时候发现胰酶不够了,干脆啥都不用,直接吹打就消化下来了。如果用EDTA,消化太快,很容易消化过头,消化太厉害也损伤细胞,影响细胞的活力。 生命经纬网友小熊猫0701: 请问大家做转染时,都是怎样处理质粒的阿?即对质粒的浓度,纯度有什么要求吗?最重要的,需要过滤除菌吗? 生命经纬网友南大一修认为: 质粒没什么特别要求,如果你有去内毒素的质粒试剂盒可以考虑用它,如果没有就用一般的试剂盒效果也不错,我们实验室用的是TaKaRa,Qiagen质粒提取试剂盒。一般小提试剂盒提出的质粒浓度是0.35μg/μl (需要电泳或分光光度仪上测定),纯度要求是OD260/280>;1.8,转染前质粒不需要过滤除菌,不过值得注意的是转染用质粒需要用DDW溶解。 生命经纬网友小熊猫0701: 多谢南大一修的指教 我是用手提的,没用Kit,请问,DDW是指去离子水吗? 生命经纬网友hanxinjun32认为: 你的293细胞状态不太好,实际上293细胞很好养,你不应该用这种状态的细胞。可以再问别人要一株状态好的。293细胞用腺病毒做转染效率很高,MOI=100的时候,转染效率可以达到90%以上。 生命经纬网友anbieten认为: 细胞状态不好,应该在传代的时候调整浓度(可以先浓度大些),让细胞能长的单层密度大些,过几代以后再按固定比例进行传代,看是否有改善.或者传完后,过不久将没有贴壁的细胞弃去,留下的可能贴壁好些. 病毒是感染细胞,不应该叫转染细胞,有的时候可作为载体转导基因.总之,一般不应该与质粒转染混淆. 生命经纬网友fangfang2007认为: 293细胞的这种状态不适合做转染,转染成功与否,细胞状态很重要。我做转染时,细胞是师姐留下的,对于细胞的代数也不大清楚,开始时转染的效率很低20%,感染不成功,后来重新大题,第一次转染效率达到80%,我认为质粒也不要放太久。 293细胞状态好了,很好养。我是用0.25%的胰酶和EDTA消化的,加上酶后不要晃动,要不然细胞会成片的脱落轻轻的放在温箱里2-3分钟,看到细胞空隙变大成沙粒状,终止消化,稍吹打即可,离心。不要消化过了,细胞虽成单个,但不容易贴壁了。 生命经纬网友j510认为: 这个细胞状态还是很好的,看起来很健康,圆缩的死细胞很少,只是传代时没有将铺均匀而已,细胞培养代数影响转染,但我的经验这不是关键因素,起码不是首要的考虑因素,注意选取指数生长期的细胞即可,另外质粒的质量很重要,再就是转染方法的优化。供参考。 生命经纬网友远方的家乡认为: 我觉得你的细胞状态不太好,我也养过293细胞,很容易消化,我用0.1%的胰酶一两分钟就消化下来,不加EDTA。还有就是转染试剂对细胞的毒性问题,你的试剂没有问题吧。我以前做转染的时候,有的细胞对它很敏感。 生命经纬网友happycowcow: 为什么大多数人都感觉gdgznf2008的293细胞状态不太好呢?我养293细胞有一年多了,根据我的经验,gdgznf2008的细胞看上去还可以啊。我用质粒和腺病毒都转过293细胞,感觉挺容易的啊。 建议gdgznf2008: 1、我在转的时候,293细胞的融合程度一般在80-90%左右。感觉gdgznf2008目前细胞的融合度不够高。融合度太低或者达到100%都不利于转染。 2、我用质粒转293时,用的QIAGEN的FILTER那种试剂盒提的质粒,感觉QIAGEN的这个试剂盒很好,提的质粒比较纯。提的质粒纯度很重要。 3、在转染前的质粒DNA一定要用去离子水溶。 4、适当调整质粒DNA与lipofectamine的比例。如果你提的质粒比较纯的话,就参考lipofectamine 2000的说明书操作就可以了。我当时用的60mm的培养板,质粒DNA用的8μg,lipofectamine 2000用的20μl。 5、转染期间用无血清培养基。我用的是Opti-MEM I Reduced Serum Medium。 供参考。 生命经纬网友贱客认为: 细胞的形态还可以 可能是: 消化时没有吹打均匀; 也可能是传代太少了 如果这种细胞用作转染应该还可以,仅供参考。 生命经纬网友jessie0983认为: 实在很奇怪为什么那么多人说这个293的状态不好呢?根据我的经验这些细胞的状态还是很好的,但是密度太稀了,如果是这样的密度做转染肯定不行的!!!当然铺的均匀也是很重要的!!! 293很容易转染的阿!!!楼主要注意转染过程的细节哦~~~~ 生命经纬网友南大一修认为: DDW 是指双蒸水,我一般用灭菌后的双蒸水。 生命经纬网友jjjj2007认为: 293细胞状态很好,只是不太均匀.可以转染或者再传一代. 把细胞吹打后,显微镜下基本为单个细胞再铺在培养皿中即可.我不喜欢用胰酶消化. |
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