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1.凝胶的选择
根据层析物质分子量的大小选择不同型号的凝胶，如除盐和除游离的荧光素，则可选用粗、中粒度的G25或G50，G250多用于分离蛋白质单体，G200多用于分离蛋白质凝胶聚合体等。
2.凝胶的预处理
称取适量的凝胶加入过量的缓冲液在冰箱（或室温）中充分膨胀，或在沸水中煮，膨胀时间应根据不同型号的凝胶而定。
凝胶量与型号和层析柱大小与规格及凝胶用量
层析柱规格& @- q1 P( c' }* d
|
凝胶的规格和用量（g） |
| 直径（cm） |
高（cm） |
容量（ml）& L) Q+ ^/ `" i |
G251 g. l% A5 @& s4 m" _0 ^* C |
G50, k3 L) X! ?% Y- _. ?* A; f |
G1000 K" k" G" q. ?: W+ ~ n |
G200 |
| 0.9 |
15; N7 d) E3 u$ |8 t, d6 b$ R( x7 H8 { |
9.5 |
2.5
|
1 |
0.6( c, i" m, x; i2 p$ I# C3 B |
0.3 |
| 0.9 |
30/ p5 J5 L+ x, [& r+ A! R" T |
19" M! z+ a* E' R0 Q6 b5 j |
5$ |
2 |
1.2 |
0.6' |
| 0.9 |
602 e$ x7 x+ H: s, {
|
38. U: R7 D- Q8 _
|
10 |
4$ V/ ?- `1 G" |( F, |
|
2.5 |
1.2 |
1.6$ \6 T# E! b5 r. J6 ^9 y" n
|
20
|
40
|
10. Y8 s- V7 V) N/ d
|
47 @) o3 u$ u" g$ y
|
2.5+ v, _1 z( R# {, V& Y) Y, N# j7 ~
|
1.2 |
| 1.6 |
402 v2 G' J+ w$ {- O
|
80
|
20 |
89 X. k" q' }, L4 e; ?* n0 {
|
5.0( O# B$ D/ }2 F6 \) U! @
|
2.47 Q! `# r/ Q) _7 H# \
|
1.6
|
70 |
402 Y |
35 |
14 |
9.0. m# H$ W4 D0 i7 |
|
4.4 |
| 1.6 |
100
|
2002 H. |- [% W5 S9 `& ]
|
50
|
20
|
12.5 |
6( O3 w. n+ J; y
|
2.6: T- v; ^) }- f& x
|
402 Y# P! C2 u0 T. b2 ]4 V
|
210 |
50
|
201 X7 P" u7 K) Q4 y( R5 c7 ~
|
12- ]% Q4 J2 {4 o) ?, C, r$ @
|
71 ~7 y$ p( T; r. ]: C
|
| 2.6 |
70% c6 E: |$ H2 ~ ^7 M. f
|
370$ s4 u s. f% b1 {0 z8 x
|
90 y9 f2 k% j& e5 u
|
35
|
20
|
128 Y. I: U& Y! _+ m( a7 C+ W
|
| 2.6 |
100 9 a1 X/ v7 o! ]$ j9 Z: l
|
530 $ Q c8 y1 o' W& g9 Y( s
|
130 k8 i1 ]5 F: t0 g0 t) A
|
50 ! D$ q$ f" Q# T: x
|
30 1 D/ {; c7 k8 ?/ }# ^
|
17 . l! O6 G0 f, f# U8 k7 `
|
| 2.6$ ]7 o8 l' f- j; ^! W4 r4 z | |
601 G6 y* w4 H) x n |
1000
|
2506 I, V$ G3 m1 |6 |' ] |
1101 l0 y& \# `; @2 X |
70) r2 W; A2 o3 W! [( ]* D: y J) o; [ |
35 |
为使粒子均匀一致需进行浮选，即加入凝胶粒子后，轻轻搅拌，静置20min，倾去沉淀的粒子，如此反复数次即可。
3.装柱
层析柱的选择一般根据分离样品的种类和样品的数量而定。纯化蛋白质时，柱床体积应为样品体积的25～100倍。去盐、游离荧光素约为样品体积的4～10倍。柱太短，影响分离效果。柱长一些，分离效果好，但柱太长，则延长分离时间，样品也稀释过度。层析柱的内径也要选择适当。内径过细，会发生“器壁效应”，即靠近管壁的流速要大于中心的流速影响分离效果。所以层析柱的内径和高度应有一定的比例。对于除盐来说应为1:5～1:25；对于纯化蛋白质来说应为1:20～1:100。
4.加样与洗脱
样品体积不宜过多，最好为床体积的1%～5%，最多不要超过10%。样品浓度也不宜过大，浓度过大粘度大，分离效果差，一般不超过4%。
洗脱液应与膨胀一致，否则更换溶剂，凝胶体积会发生变化，影响分离效果。洗脱液要有一定的离子强度和pH值。分离血清蛋白常用0.02～0.1Mol/LpH6.9~8.0的PBS液（0.14Mol/LNaCl）和0.1Mol/LpH8.0Tris-HCl缓冲盐溶液（0.14Mol/LNaCl）。
5.洗脱液收集
利用自动分步收集器收集，并以20%磺基水杨酸测试，当蛋白液下来时，开始分管收集，至无蛋白液为止。
6.凝胶柱的重复使用与保存
当样品的各组分全部洗脱下来之后，即可加入新的样品，继续使用。保存方法有三种：
（1）在液相中保存最方便，即于凝胶悬液中加入防腐剂（如0.002%洗必泰）或高压灭菌后4℃保存。此法至少可以保存半年以上。
（2）用完后，以水冲洗，然后用60%~70%酒精液冲洗，凝胶体积缩小，即在半收缩状态下保存。
（3）长期不用者，最好以干燥状态保存，即水洗净后，用含乙醇的水洗，逐渐加大乙醇用量，最后用95%的乙醇洗，可全部去水，再用乙烯去除乙醇，抽滤干，于60℃~80℃干燥后保存。加乙醇时，切忌一上来就用浓乙醇处理，以防结块。
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